6.4. Техника дезинфекции

Техника дезинфекции помещений и инвентаря. Помещение перед
дезинфекцией освобождают от посторонних предметов. Потолок и стены
обметают влажным веником, пол моют. Если в помещении зимовал
скот, то с пола, пропитанного навозной жижей, снимают слой земли
толщиной 5—10 см, насыпают свежую землю и утаптывают. Щели
в стенах замазывают глиной и белят. Мусор после уборки сжигают.
Выкормочный инвентарь (циновки, этажерки, корзины и т. д.) ошпаривают
крутым кипятком со щелоком и выставляют на два-три дня на
солнце. После уборки в помещение вносят все предметы, используемые
при червокормлении, и приступают к дезинфекции.
Большие колхозные и совхозные червоводни, инкубатории, помещения
гренажных заводов дезинфицируют мощными опрыскивателями
и механизированными дезинфекционными установками. В ветеринарной
практике используют установку ДУК-2, смонтированную на шасси
грузового автомобиля. Установка ссстоит из цистерны вместимостью
1 м:’ для рабочего дезинфицирующего раствора; двух резервуаров-бачков
вместимостью 50 л для исходных концентрированных дезинфекционных
средств и подогревателя (водогрейного котла). Раствор подогревается
в котле до 90°С и по системе трубопроводов попадает в напорный
н приемный шланг (рис. 101). При расходе 1 л рабочего раствора
на 1 м2 поверхности за 8 ч установкой можно обработать около
3 ООО м2.
Небольшие помещения опрыскивают широко распространенными
в шелководческой практике ранцевыми аппаратами или гидропультом.
Ранцевые аппараты выпускают трех типов: опрыскиватели ранцевые
диафрагмовые — ОРД с диафрагмовым насосом с воздушным
колпаком, приводимым в действие ручным рычагом; опрыскиватели
ранцевые поршневые — РДП-4 с поршневым воздушным насосом,
расположенный снаружи резервуар соединен трубкой с его верхним
днищем; опрыскиватель ранцевый
пневматический ОРП-В «Автомакс» (рис. 102); ранцевый аппарат типа
«Автомакс» удобен для переноски и пользования, производителен,
просто устроен и прочен. Вместимость 12 л, заправленный аппарат
весит 21,3 кг. В зависимости от типа наконечника (распылителя)
при работе аппарата получается различный по размеру конусообразный
распыл: от 1,5 до 2 м в диаметре у основания конуса, находящегося
на расстоянии 1,3—2 м от отверстия наконечника. Преимущество
его перед остальными ранцевыми аппаратами в том, что
опрыскивание протекает без дополнительных усилий на
качание насоса, благодаря чему все внимание сосредоточивается
на управлении брандспойтом.
Расход жидкости нормируют из расчета потребности
на одну коробку грены, на единицу кубатуры или
площади. Наименее точны расчеты на коробку грены и
единицу кубатуры; они могут широко колебаться в зависимости
от линейных размеров помещения, количества ниш
в стене и т. д. Нормы расхода, исчисленные на единицу площади,
без учета особенностей дезинфицируемой поверхности, способов
дезинфекции и свойств применяемого вещества, также не могут
быть вполне точными. Например, расход жидкости для надлежащего
смачивания глинобитных стен будет вдвое больше, чем для стен
с черной штукатуркой, а минимальное количество жидкости для смачивания
поверхности из жердей или камыша точному учету не поддается.
Кроме того, предел необходимого увлажнения установить
трудно, и субъективные расхождения здесь всегда возможны. Наконец,
величина расхода жидкости зависит от способа ее распределения
на дезинфицируемой поверхности (кисть, тряпка, веник, опрыскиватель
с различной конструкцией распылителя и т. д.).
Наиболее экономный расход жидкости дают опрыскиватели и распылители,
равномерно увлажняющие орошаемую поверхность. В этсм
случае в зависимости от свойства поверхности на 1 м2 нужно 0,25—
0,75 л жидкости. На помещение площадью в 50 м2 требуется от 12 до
36 л жидкости. Эту норму следует считать минимальной, при аккуратном
и умелом использовании жидкости. Раствор можно экономить,
менее обильно смачивая потолок, так как теоретическая высота зоны,
подлежащей обеззараживанию, не превышает 2 м.
Важным условием эффективного применения дезинфицирующих
средств являются температура и влажность воздуха. Циркуляция
и сухость воздуха ускоряют испарение растворов на поверхности обеззараживаемых
предметов и сокращают срок их действия. Вопреки существующим
представлениям улетучивающийся из растворов формальдегид
не имеет существенного значения для обеззараживания; эффективность
обработки достигается только при непосредственном соприкосновении
растворов с микроорганизмами.
Перед опрыскиванием в помещении плотно закрывают окна, двери,,
вентиляционные отверстия, замазывают щели, смачивают пол и стены
водой. По окончании работы опрыскиватель промывают водой, так как
102. О п ры ски в а т ел ь ранцевый пневматичсс
ки й О РП - В «Автомакс».
химические вещества разрушают металл. После дезинфекции помещение
оставляют на сутки закрытым, а затем открывают окна, двери
и проветривают его. Чтобы быстрее удалить запах формальдегида,
помещение орошают 20%-ным раствором аммиака, которого берут
по объему в два раза меньше по сравнению с количеством израсходованного
формалина.
Дезинфицированное помещение ни для каких других целей, кроме
червокормления, занимать нельзя. Поэтому санитарную обработку
проводят в возможно более сжатые сроки, перед получением гусениц.
Дезинфекция поверхности грены. Задача современного гренажа
в значительной мере заключается в приготовлении незараженной
грены, отложенной бабочками, которые при поголовном микроскопическом
исследовании оказываются здоровыми. Инструкция по приготовлению
грены предусматривает браковку коконов и кладок по признаку
зараженности их не только пебриной, но и возбудителями других
болезней. Например, браковке подлежат кладки от бабочек, примикро-
скопировании которых были обнаружены бактерии. Это мероприятие
рекомендовано еще Л. Пастером. По представлениям того времени,
присутствие бактерий в теле бабочек указывает на заболевание шелкопряда
фляшерией и может передать следующему поколению возбудителей
этой болезни, а также предрасположение к ней. Между тем существуют
три возможности для формирования бактериальной флоры
в теле бабочек:
1) бактерии, унаследованные от личиночной стадии физиологически
ослабленного шелкопряда и размножившиеся в кишечнике бабочек;
2) бактерии, размножившиеся в трупах бабочек, погибших от
■септицемии;
3) бактерии, размножившиеся в трупах бабочек вследствие неполной
их консервации (высыхания) при хранении во влажном и плохо
проветриваемом помещении.
По результатам микроскопирования бабочек нельзя судить ни
о наследственном предрасположении, ни о заразительных свойствах
обнаруженных бактерий, ни о заражении грены, отложенной этими
бтбочками. Между состоянием здоровья выкормок, фактом обнаружения
бактерий в бабочках и микрофлорой грены последовательной
преемственности может и не быть.
Изучая возможность перехода бактериальной флоры из тела бабочки
в яйцо, Мазер тщательно дезинфицировал его поверхность и затем
растирал в стерильном бульоне стеклянной палочкой, вставленной
и ватную пробку пробирки. Сделанные по этому методу посевы в отдельных
случаях прорастали; по мнению Мазера, это вызывали бактерии,
находящиеся внутри яйца. Он указывает также, что процент
проросших посевов возрастает тогда, когда грена взята от бабочек,
трупы которых содержали обильную бактериальную флору. Возможно,
что рост бактерий в посевах Мазера наблюдался вследствие несовершенной
дезинфекции поверхности грены, хотя появление бактерий
внутри грены, насколько можно судить по результатам исследования
яиц домашних птиц, вполне правдоподобно. Дальнейшая судьба
зараженной бактериями грены неизвестна; возможно, что она погибает
во время хранения и инкубации, или же, напротив, дифференцирующиеся
в процессе эмбриогенеза мезодермальные клетки разрушают
бактерий. В литературе известны случаи проявления целлюлярного
(фагоцитарного) иммунитета у клеток дифференцирующихся зародышевых
листков.
Более определенны сведения относительно бактерий, встречающихся
на скорлупке грены. Поверхность грены может быть загрязнена
микроорганизмами различного происхождения. Состав их довольно
разнообразен. Чаще встречаются широко распространенные в природе
бактерии сапрофиты — стафилококки и споровые палочки. Источником
загрязнения служат пылевые частицы и трупы бабочек, сохраняющиеся
в изоляционных мешочках вместе с греной. Иногда бабочки
содержат относительно устойчивую флору, состоящую главным образом
из стрептококков и унаследованную от ослабленных гусениц.
В. Д. Штибен установил, что выкормки, болеющие чахлостью,
дают много бабочек (свыше 27%), зараженных стрептококками; на
поверхности отложенной ими грены, как правило, содержатся эти бактерии,
а вышедшие из нее гусеницы оказываются стрептококконоси-
телями, причем такие выкормки с повышением температуры более
23°С легко заболевают чахлостью (Штибен, Максианович). По-видимому,
поверхностное заражение грены патогенными для шелкопряда
бактериями менее опасно, чем возбудителями пебрины, желтухи и мускардины,
так как даже наиболее опасные для шелкопряда септические
инфекции в младших возрастах осуществляются с большим трудом.
Известен случай, когда грена перед инкубацией была сильно загрязнена
чистой культурой возбудителя септицемии шелкопряда Bact.
prodigiosum. Наблюдение за гусеницами первого возраста не установило
случаев гибели, вызванной этой бактерией, а подробное бактериологическое
обследование во втором возрасте не смогло обнаружить ее
ни у шелкопряда, ни на самой выкормочной поверхности (Михайлов,
1945).
Бабочки, пораженные мускардиной, встречаются крайне редко;
споры гриба все же загрязняют поверхность грены, попадая на нее
из иных источников; они способны прорастать на скорлупке, внедряться
внутрь грены и вызывать ее гибель. Гренажное производство
бракует партии, содержащие свыше 3% мускардинных коконов, руководствуясь
не столько санитарными соображениями, сколько тем,
что наличие их уменьшает процент выхода бабочек. Гренажные заводы
всегда браковали партии коконов с «глухарями», еще до того,
как возможность проникновения вируса ядерного полиэдроза в грену
была доказана; впрочем, J1. М. Тарасевич считает, что вирус значительно
чаще находится на поверхности скорлупки. Наибольшую безопасность
в эпизоотическом отношении представляет грена, на поверхности
которой нет болезнетворных микроорганизмов.
Некоторую пользу приносят механическая очистка и промывка
грены, освобождающие ее поверхность от загрязнений и микроорганизмов.
Лучшие результаты может дать дезинфекция.
Японская инструкция рекомендует дезинфицировать грену в ноябре
или декабре, перед промывкой ее, или же весной, перед инкубацией.
Для этого пользуются 2—3%-ным раствором формалина, погружая
в него грену при температуре 21 °С. Время обработки 2%-ным
формалином — 30 мин, 3% —20 мин. После тщательной промывки
водой грену просушивают.
Шуршнкова не наблюдала вредного действия на грену 70-минутной
ванны из 2%-ного формалина и 50-минутной из 3%-ного при температуре
10°С и последующей промывки водой в течение 20—25 мин.
Хотя японские специалисты и предостерегают против пользования сулемой
для дезинфекции грены, Казаровэ показала, что обработка
0,1—0,2%-ными растворами сулемы не влияют на оживляемссть
грены.
Итальянские авторы рекомендуют дезинфицировать грену против
мускардины погружением на несколько минут в 5-%-ный лизоформ
или 0,1%-иую сулему. Известно также, что соляная кислота с удельной
плотностью 1,129 и экспозицией 8 мин при 30°С полностью дезинфицирует
поверхность грены от всех патогенных для шелкопряда
микроорганизмов.
В соответствии с инструкцией МСХ СССР (1948) грену на гренажных
заводах дезинфицируют 3%-ным раствором формалина, продолжительность
обработки 50—60 мин, после чего ее промывают проточной
водой в течение 25—30 мин. Часто встречающиеся на поверхности
грены спорообразующие бактерии проявляют, по мнению И. А. Кириченко
(1977), значительную устойчивость по отношению к формалину.
Он предложил применять для обработки грены эритромицин-антибиотик,
продуцентом которого является почвенный актиномицет Strep-
1o:nyces erythreus. Он обладает широким спектром сильного антимикробного
действия против многих грамположительных бактерий.
Грену обрабатывали раствором эритромицина в концентрации 2 млн.
единиц на 1 л воды при экспозиции 45 мин. По результатам бактериологического
контроля установлено, что предлагаемое средство обеззараживает
естественно инфицированную грену на 97,5%, тогда как 3%-ный
формалин, взятый в качестве контроля, только на 27%. Этот же автор
с соавторами (1979) испытывали обеззараживающее действие на грену
дихлорэфоса. Подобно многим фосфорорганическим инсектицидам,
это сильный ингибитор холинэстеразы в развивающейся грене (с 5 —
6 дня после откладки); он оказывает на нее отрицательное действие,
чем значительно ограничивает допустимые сроки дезинфекции грены,
несмотря на возможный обеззараживающий эффект.
Научные сотрудники Украины и Узбекистана Т. Б. Аретинская,
И. М. Азимджанов и В. Н. Синицкий (1981) провели испытание антибиотика
патулина, продуцентом которого является Aspergillus clavotus
в качестве средства для дезинфекции поверхности грены.
Кириченко и Рыхлицкая (1982) предложили для дезинфекции
гречы в гренажном производстве антибиотик канамицин, относящийся
к группе стрептомицинов и выделенный в 1957 г. Умедзавой нз культуральной
жчдкости актиномнцета Стрептомицес канамицетикус.
А имбиотик обладает значительной бактерицидной активностью и менее
токсичен для теплокровных, чем стрептомицин. Ими испытан
0,2%-ный раствор (2 млн. ед на 1 л), в который погружали грену в марле
на 40 мин. Результаты сопоставлялись с дезинфицирующим действием
эритромицина, предложенного для той же цели ранее ((Кириченко
И. А., 1977). Канамицин не снижает жизнеспособность грены
и не уступает эритромицину в обеззараживающем действии, но имеет
ряд существенных преимуществ. Рекомендация внедрена в гренопро-
изводство Украины.